REVISTA DE INVESTIGACIÓN E INFORMACIÓN EN SALUD N° 40
Vol. 16 – 1ER SEMESTRE 2021
ISSN: 2075-6208
Universidad Privada del Valle – Bolivia
https://doi.org/10.52428/20756208.v16i40.68
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Fecha de Recepción: 18.08.2020
Fecha de Aprobación: 17.06.2021
Fecha de Publicación: 30.06.2021
ARTÍCULO DE REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA
Interpretación de pruebas diagnósticas de COVID-19
Interpretation of diagnostic tests for COVID-19
Renan Humberto Crespo Román1
Ketty Gruschenka Velarde Dunois2
1. Médico Cirujano. Diplomado en Gestión y Administración de aula en Educación superior
CEPIES. Maestría en Educación Salud Publica. Director Académico de la Carrera de
Medicina Universidad Privada del Valle, subsede La Paz. rcrespor@univalle.edu;
https://orcid.org/0000-0002-6824-8251
2. Licenciatura en Bioquímica y Farmacia. Maestría en Ciencias. Instituto Oswaldo Cruz Rio
de Janeiro. Docente de Hematología carrera de Bioquímica y Farmacia, docente de
Inmunología carrera de Medicina. Universidad del Valle, subsede La Paz.
kvelarded@univalle.edu; https://orcid.org/0000-0003-3658-5824
RESUMEN
Uno de los permanentes e importantes retos en la actualidad es la correcta selección y
realización de las pruebas diagnósticas de COVID – 19, su relación clínica, la evaluación con
las características de transmisión y la interpretación de los resultados. Es de suma
importancia determinar el posible momento de transmisión para la elección de la técnica que
nos dará un resultado confiable y detectará los marcadores que permitan realizar el
diagnóstico. Las pruebas pueden ser directas, que nos permiten detectar los antígenos o
partículas virales; o indirectas, mismas que nos permiten la localización de inmunoglobulinas
que nos proporcionarán información sobre la evolución en la que se encuentra el paciente.
En una primera fase de la infección, se pueden desarrollar pruebas directas con una mejor
efectividad, y en una etapa más avanzada la detección es realizada por pruebas indirectas.
Palabras clave: COVID-19. Interpretación. Pruebas diagnósticas.
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ABSTRACT
Nowadays, one of the permanent and important challenges is the correct selection and
performance of diagnostic tests for COVID - 19, their clinical relationship, the evaluation
with the transmission characteristics and the results interpretation. It is very important to
determine the possible moment of transmission for the technique’s choice that will give us a
reliable result and detect the markers that allow the diagnosis to be made. The tests can be
direct, which allow us to detect antigens or viral particles; or indirect, which allow us to
locate immunoglobulins that will provide us with information of the patient. In a first phase
of the infection, direct tests can be developed with better effectiveness, and in a more
advanced stage the detection is carried out by indirect tests.
Keywords: COVID-19. Diagnostic tests. Interpretation.
INTRODUCCIÓN
Mediante la presente publicación se pretende presentar los parámetros de diagnóstico de
COVID -19 con el empleo de pruebas de análisis genético, y de pruebas rápidas que nos
permitan una interpretación correcta de los resultados, considerando las etapas de la
obtención de las muestras en relación al posible momento de infección, la sintomatología y
la respuesta inmunológica que presente el paciente.
Entonces, es preciso conocer la estructura del virus; describir las características genéticas que
nos permitan evaluar las regiones que son empleadas en la amplificación; relacionar la
respuesta inmune en las diferentes etapas de la infección y describir los fundamentos de las
técnicas y su correcta interpretación.
Por lo tanto, a través del presente artículo, se pretende evaluar los métodos propuestos para
minimizar el tiempo de los reportes y su eficacia en el diagnóstico.
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DESARROLLO
El COVID-19 es una enfermedad causada por el coronavirus SARS-CoV-2 que se detectó en
diciembre de 2019 en la ciudad Wuhan. Provincia de Hubei, en China (1). El SARS
(Síndrome Respiratorio Agudo Grave) es el estadio severo de la COVID-19 producido por
un daño masivo alveolar y una falla respiratoria progresiva. El período de incubación es de
3 a 7 días, pero puede llegar a 14 días (2). Este virus pertenece a la familia Coronaviridae, a
la subfamilia de virus ARN orthocoronavirinae (3).
Es un virus ARN de hebra simple, cuyo genoma es de aproximadamente 27-32 kb, que
codifica proteínas no estructurales, como proteasas, helicasas y ARN polimerasas; y
proteínas estructurales: de membrana (M), de envoltura (E), nucleocápside (N) y la proteína
espiga (S) (Fig. 1)
Figura 1. Imagen del virus SARS-CoV-2
https://scielo.conicyt.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0718-
381X2020000300331 (septiembre 2020).
El SARS-CoV-2 utiliza la proteína espiga para infectar a las células epiteliales (células
alveolares tipo II, AT2) de pulmón e intestino a través de una proteína receptora de
membrana, la enzima convertidora de angiotensina 2 (Fig.2) (ACE2, por sus siglas en inglés),
(4) (5).
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Figura 2. Ingreso del SARS-CoV-2 a la célula
https://www.aepap.org/sites/default/files/documento/archivos-
adjuntos/ttos_potenciales_covid_19.pdf (mayo 2020).
Pruebas diagnósticas de laboratorio de COVID-19
El diagnóstico de SARS-CoV-2 es importante para el tratamiento y monitorización de los
pacientes, aplicación de medidas de prevención, aislamiento y vigilancia epidemiológica.
Existen tres tipos de pruebas para su diagnóstico:
1. Pruebas de detección de ácidos nucleícos a través de la Reacción en cadena de la
Polimerasa o PCR
La prueba de la reacción en cadena de la polimerasa con transcriptasa inversa en (RT-PCR o
qRT-PCR (cuantificada en tiempo real) en la actualidad es la técnica de referencia y de
elección para el diagnóstico de COVID-19 (6), es una técnica molecular de detección y
amplificación de ácidos nucleicos, es decir de material genético, ARN, del SARS-CoV-2 en
muestras biológicas clínicas.
Se han obtenido resultados positivos de la RT-PCR para SARS-CoV-2 en muestras
nasofaríngeas y orofaríngeas. La OMS (3) recomienda muestras nasofaríngea y orofaríngea
en el mismo tubo para aumentar la carga viral.
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En infecciones graves se pueden recoger muestras de vías respiratorias bajas, esputo (si hay
expectoración) o de aspirado endotraqueal o bronquial y lavado broncoalveolar, en las que
se puede encontrar positividad hasta al cabo de 3 semanas tras el inicio de la enfermedad con
el RT-PCR. Para la precisión diagnóstica es necesario que todos los pasos del proceso de las
muestras (recogida, transporte, almacenamiento y procesamiento) sean correctos.
Para la obtención de la muestra nasofaríngea, los hisopos nasofaríngeos son más estrechos y
flexibles que los orofaríngeos. Las torundas deben ser de dacrón o poliéster. El hisopo se
introduce en una de las fosas nasales y se desplaza por el suelo de la cavidad nasal siguiendo
el tabique hasta la nasofaringe, hasta la muesca de seguridad, sin forzar si se encuentra
resistencia (Fig. 3). Se gira la torunda con suavidad durante 5-10 segundos. A continuación,
se debe introducir el hisopo en un medio de transporte adecuado, para virus o universal,
romper el mango del hisopo por la muesca y cerrar el tapón.
Figura 3. Obtención de muestra para PCR
https://www.ins.gov.co/Noticias/Coronavirus/Lineamientos%20para%20la%20vigilancia%
20por%20Laboratorio%20de%20virus%20respiratorios%2006.03.20.pdf (marzo 2006).
Las muestras se transportan en frío, a 4º C (3,7,8) embaladas en contenedores bajo normativa
de Sustancia biológica clase B (UN3373).
La ejecución de la RT-PCR se realiza en laboratorios de microbiología clínica, necesita
personal experto en microbiología molecular y medidas de bioseguridad. La muestra debe
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ser en primer lugar inactivada. La PCR es una técnica utilizada para amplificar secuencias de
ADN (9) (10).
Consta de dos fases: extracción y amplificación de los ácidos nucleicos (Fig. 4). El ARN es
monocatenario y muy inestable por lo que primero debe transcribirse de forma inversa en
ADN complementario (ADNc) utilizando una transcriptasa inversa.
Figura 4. Reacción de la Polimerasa en Cadena
https://theconversation.com/como-se-detecta-si-un-paciente-esta-infectado-por-
coronavirus-134003 (marzo 2020).
Posteriormente, se utiliza el procedimiento de PCR convencional para amplificar el ADNc.
Se utilizan secuencias cortas de ADNc, cebadores o primers, para seleccionar la parte del
genoma a amplificar.
Los genes detectados de SARS-CoV-2 son el gen E recomendado por la OMS como
screening de primera línea (11), el gen RdRp, para estudio de confirmación y el gen N para
estudio adicional de confirmación. Otro gen usado es el Orf1ab (Fig. 5).
Cambios de temperatura permiten la duplicación de la secuencia del ADN que está siendo
copiada, permitiendo la producción de millones de copias de la secuencia estudiada en unas
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horas. Una ventaja de la PCR es que permite procesar simultáneamente un elevado número
de muestras (12).
Figura 5. Genes amplificados
https://biotechmagazineandnews.com/nuevo-mapa-genetico-del-sars-cov-2/ (abril 2020).
En el reporte de resultados del PCR puede haber falsos negativos y falsos positivos. Un único
resultado negativo en una prueba de PCR, especialmente si se ha realizado a partir de una
muestra de las vías respiratorias superiores, no excluye la posibilidad de una infección por
SARS-CoV-2. Se recomienda repetir el muestreo, e incluso con una muestra de las vías
respiratorias inferiores en caso de enfermedad grave o progresiva (3).
Posibles resultados falsos negativos por PCR pueden reportarse en una etapa inadecuada para
la detección, si hay poca eliminación de virus por el paciente, escasa cantidad en la obtención
o si la muestra es inadecuada o cuando no se sigue la cadena de frío. Por otro lado, posibles
resultados falsos positivos pueden reportarse si hay contaminación cruzada entre muestras
durante el procesamiento o confusión de muestras.
En la actualidad, se han desarrollado pruebas rápidas de PCR en diversos sistemas en menos
de una hora. Algunas de estas pruebas ya tienen la aprobación de la FDA (13).
El primer test de diagnóstico rápido o point-of-care de rRT-PCR que ha obtenido la
aprobación de la FDA es el Xpert Xpress SARS-CoV-2 (Cepheid). Utiliza muestras
nasofaríngeas y ofrece resultados en 45 minutos. Aunque no es necesario enviar las muestras
al laboratorio, se ejecuta en máquinas automatizadas de las que no es fácil disponer. Y tiene
el inconveniente de que solo puede procesar las muestras de una en una (14).
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Algunas de las pruebas rápidas de PCR en desarrollo utilizan la amplificación isotérmica
mediada por bucle de transcripción inversa (RT-LAMP, del inglés reverse transcription
loop-mediated isothermal amplification), una nueva técnica de amplificación y detección de
ácidos nucleicos para el diagnóstico de agentes infecciosos (14) (15)
No requiere aislamiento de RNA y se la puede realizar en unos 30 minutos. Tiene las ventajas
de funcionar a temperatura constante, ser menos compleja y precisar menos energía que la
PCR convencional. Incluso están en estudio tests de diagnóstico rápido que combinan la
tecnología LAMP con dispositivos de papel que pueden ser integrados con una aplicación de
teléfonos inteligentes (6) (7) (8) (15).
Las pruebas podrían realizarse de manera más sencilla y barata utilizando la Amplificación
Isotérmica por Lazo (LAMP). Esta técnica funciona a temperatura de 60 °C, se lleva a cabo
en un solo tubo y puede proporcionar resultados fáciles de leer en 30 minutos, lo que permite
realizar e interpretar las pruebas in situ.
2. Pruebas de detección de antígenos
Detectan la partícula viral de los coronavirus, se basan en la detección de proteínas virales
específicas de SARS-CoV-2 en la muestra, como la proteína N y las subunidades S1 o S2 de
la proteína espiga.
La muestra se obtiene del tracto respiratorio, generalmente de exudado nasofaríngeo u
orofaríngeo, mediante un hisopo, o de esputo y se requiere una correcta recogida en el
momento adecuado, como en las pruebas de PCR. Según estudios la carga viral es mayor en
esputo y en nasofaringe que en orofaringe, y se ha visto que es más alta en la fase aguda de
la infección (los primeros 7 días del inicio de la sintomatología). Los resultados indican baja
sensibilidad por lo que en la actualidad no están aprobados (12) (13) (16) (17).
3. Pruebas de detección de anticuerpos Ig G e Ig M
Las más empleadas para el diagnóstico rápido de SARS-CoV-2 son las la
inmunocromatografía, enzimoinmunoanálisis (ELISA) y la quimioluminiscencia (CLIA).
Detectan la presencia de anticuerpos IgM e IgG frente al SARS-CoV-2 en una muestra de
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sangre, suero o plasma. Hay pruebas que detectan los anticuerpos totales y otros que
diferencian IgG o IgM o ambas en el mismo kit.
Según la Sociedad Española de Inmunología (SEI), tras la infección se generan anticuerpos
de tipo IgM y aunque parece que empiezan a elevarse aproximadamente a los 5 a 7 días tras
la infección, los test los detectan mejor a los 8 a 14 días. Gráfico 1. Pasados los 15 a 21 días
aparecen los anticuerpos de tipo IgG (29). Pueden ser útiles para conocer si un paciente ha
estado en contacto o no con el SARS-CoV-2 aunque no permite conocer en qué fase de la
infección está. La detección de IgM e IgG podría usarse de forma complementaria a la PCR
para una mayor sensibilidad en el diagnóstico de los pacientes tal como sugieren varios
estudios (18) (19) (2).
Es importante resaltar que para diagnosticar el COVID-19 en pacientes sospechosos se debe
combinar los hallazgos de la RT-PCR con datos clínicos por síntomas y signos,
epidemiológicos por el riesgo de infección, radiología e imagenología torácica, ya que las
alteraciones radiológicas en el COVID-19 son a veces más precoces que la positividad de la
RT-PCR (20).
Gráfico 1. Marcadores de detección de SARS-CoV-2
https://amf-semfyc.com/web/article_ver.php?id=2628 (abril 2020).
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Inmunocromatografía
Es un análisis en fase sólida para la detección rápida y diferenciada de anticuerpos IgG e IgM
en sangre total, plasma o suero sanguíneo. Por lo tanto, la muestra puede ser obtenida por
punción venosa o capilar del dedo del paciente, permitiendo la realización de pruebas a gran
escala.
La prueba utiliza anticuerpos IgM anti-humano (línea de prueba IgM), IgG anti-humano
(línea de prueba IgG) e IgG anti-conejo de cabra (línea de control C) inmovilizadas en una
tira de nitrocelulosa. La almohadilla de color vino contiene oro coloidal combinado con
antígenos virales, cuando se coloca la muestra seguida de buffer y, en caso de presencia de
anticuerpos específicos, se unen a los conjugados formando complejos antígeno-anticuerpo
que migran a través de la membrana por acción capilar presentando bandas en el área de
detección (Fig. 6).
Figura 6. Principio de inmunocromatografía
https://digibuo.uniovi.es/dspace/bitstream/handle/10651/19167/TFM%20Blanco%20Covia
n.pdf;jsessionid=F42AEE06C2E143A5B3809D7BFFAC0790?sequence=3 (julio 2013).
Se recoge la muestra con el tubo capilar (o pipeta), se coloca la muestra de sangre en el casete,
se añade el tampón o diluyente y se obtiene los resultados en unos 15 minutos. Hay una banda
coloreada de control que debe aparecer marcada para que la determinación sea válida. Si
además aparece coloreada la línea M indica positividad de IgM, si aparece la línea de IgG,
positividad de IgG y si se marcan ambas líneas, positividad de IgG e IgM.
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La prueba es rápida demora de 15 a 20 minutos. La interpretación de resultados de las bandas
según la evolución clínica (Fig. 7).
Figura 7. Interpretación de la prueba de inmunocromatografía
https://www.newtral.es/empieza-el-analisis-a-90-000-personas-para-saber-el-impacto-
real-de-covid-19-en-estos-meses/20200427/ (abril 2020).
La prueba de ELISA
Es la técnica de ensayo por inmunoabsorción ligado a enzimas (en inglés Enzyme Linked
Inmuno Sorbent Assay). Es una prueba que fue diseñada 1971 por investigadores suecos y
holandeses y permite la detección de diferentes antígenos y anticuerpos. Para la detección de
anticuerpos se realiza la sensibilización en fase sólida en pozos de placas de poliestireno con
antígenos que permiten el diagnóstico específico una vez que se ha establecido la producción
de inmunoglobulinas (Fig. 8).
Figura 8. Sensibilización con Antígenos
http://apps.sanidadanimal.info/cursos/inmunologia/ca051.htm (2010).
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La muestra empleada puede ser suero o plasma que se incuba en los pocillos para luego
adicionar un conjugado constituido por una enzima y una antiglobulina que puede ser anti
IgG o IgM. En caso positivo, desarrolla una coloración cuya intensidad varía con la
concentración de la inmunoglobulina, la que puede ser evaluada a través de una lectura de la
densidad óptica en lector de ELISA, que permite determinar la cantidad de anticuerpo
relacionando la lectura de la muestra, comparando con controles positivos y negativos que
nos permiten determinar un umbral de detección. El reporte se realiza en unidades como son
presentadas en la (Fig. 9).
Figura 9. Reporte de resultado
Fuente: Elaboración propia, (julio 2020).
Quimioluminiscencia (CLIA)
Es una prueba que se basa es la presencia de una esfera magnética que fue revestida con
antígeno especifico que puede ser la proteína S, N o el virus entero y según el antígeno
empleado puede presentarse una variación de sensibilidad y especificidad. A la esfera con el
antígeno se coloca la muestra y si hay presencia de anticuerpo habrá una ligación con el
mismo y se coloca un anticuerpo IgG o IgM marcado con isoluminol o luminol, se genera
emisión de luz empleando peróxido de hidrogeno (Fig. 10).
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Figura10. Principio de Quimioluminiscencia
https://slideplayer.es/slide/13633418/ (2016).
En esta técnica se realiza el reporte del resultado como se evidencia en el resultado de la Fig.
11.
Fig. 11 Reporte de resultado
Fuente: Elaboración propia (julio 2020).
DISCUSIÓN
La elección de la prueba diagnóstica a ser desarrollada en cada paciente depende del posible
momento de infección que determinará un incremento de la carga viral transitorio, que estará
en realación con la sintomatológía, en el caso de presentarse y una posterior elevación de
inmunoglobulinas, consecuente a la evolución característica de la infección, que es particular
en cada individuo.
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El periodo de incubación del SARS-CoV-2 es alrededor de 5 a 6 días (6) (11) (13) La
duración de los síntomas es de alrededor de 13 a 16 días. La carga viral en nariz y faringe va
ascendiendo desde el momento de la infección (inicio del periodo de incubación) hasta
alrededor del 7º día y va disminuyendo a partir de ese día.
La RT-PCR puede detectar ARN viral desde unos días antes de la aparición de los síntomas,
aumentando la probabilidad de positividad hasta ser máxima alrededor del 7º día y
disminuyendo hasta aproximadamente el final de la segunda semana (7).
En los primeros días del periodo de incubación y tras la desaparición de los síntomas, la carga
viral es baja y puede no ser detectada por PCR por estar por debajo del umbral de detección.
La sensibilidad de detección es incrementada realizando pruebas ditectas e indirectas que
permiten determinar la evolución de la infección. Un resultado negativo de PCR puede
indicar ausencia de infección o carga viral indetectable.
Las pruebas serológicas se basan en la detección indirecta del virus a través de la deteccióm
de inmunoglobulinas o anticuerpos generados por el propio organismo, que proporcionan
información, no solo diagnóstica sino también epidemiológica. Estas pruebas adquieren gran
importancia en la detección de pacientes asintomáticos, la consecuente vigilancia y rn los
pacientes que no generan anticuerpos.
Las pruebas indirectas de detección de IgM e IgG que están siendo desarrolladas en nuestro
país son la Inmunocromatografía, las pruebas de ELISA y la Quimioluminiscencia. La
inmunocromatografia (la prueba rápida) es la más empleada por ser que reporta resultados
en menor tiempo, aproximadamente 15 minutos; sin embargo, las pruebas de ELISA y de
Quimioluminiscencia tienen mayor especificidad y sensibilidad, son procesadas en un tiempo
aproximado de 3 horas y permiten la evaluación semicuantitativa de inmunoglobulinas. La
técnica de CLIA es la que presenta menor porcentaje de resultados falsos negativos. Un
resultado negativo nos revela que no hubo contacto con el virus, que aún no se sintetizaron
los anticuerpos o que estos ya no están siendo sintetizados.
La interpretación comparativa de los resultados de las pruebas realizadas es detallada en la
Tabla 1.
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RESULTADO
PCR
IgM
IgG
SIGNIFICADO CLÍNICO
( - )
( - )
( - )
Negativo
( + )
( - )
( - )
Fase precoz de la infección – Periodo ventana
( + )
( + )
( - )
Estadio temprano de la infección - Fase aguda
( + )
( + )
( + )
Fase establecida - Fase activa
( - )
( + )
( + )
En evolución - Confirmar PCR
( + )
( - )
( + )
Fase final de la infección
( - )
( + )
( - )
Estadio temprano - Confirmar PCR
( - )
( - )
( + )
Infección pasada
Tabla 1. Interpretación de resultados de laboratorio combinando PCR y detección de
anticuerpos
Fuente: Modificada del protocolo de Junta de Castilla y León (2020).
CONCLUSIONES
Considerando las implicaciones de la infección por el SARS-CoV-2 y a través de información
personal de varios grupos de la población que desarrollan actividades en diferentes rubros,
se pudo determinar que muchos no se realizan la prueba por diferentes factores, como ser
económicos, desconocimiento o disposición de tiempo. La falta de información y
seguimiento facilitan la propagación de la infección con incremento de casos.
La consulta médica es fundamental en todo caso sospechoso para la evaluación clínica, tanto
para la administración terapéutica como para las medidas de aislamiento, que actualmente
son facilitadas por atención por vía virtual a disposición de la población.
La atención permite realizar la elección pertinente de exámenes de laboratorio y su correcta
interpretación ya que las pruebas descritas en el presente artículo están siendo desarrolladas
en nuestro país.
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Es importante mencionar que los patrones de comportamiento de respuesta inmune y
desarrollo clínico tienen variación en diferentes individuos, así como la progresión de la
misma.
Finalmente, la relación de la interpretación de resultados con el riesgo de transmisión,
aislamiento social y retorno a actividades están determinados por criterios clínicos y
laboratoriales.
El tiempo de inmunidad y la probable reinfección, así como las recaídas están aún en estudio.
El patrón de respuesta inmune en la reinfección frente a diferentes patógenos nos indica un
leve incremento y posterior disminución de la síntesis de IgM y una síntesis más rápida e
intensa de la IgG como se presenta en el Gráf. 2. Comportamiento que podría ser deducido
en una reinfección por el SARS-CoV-2. Tema de evaluación para posteriores
investigaciones.
Gráfico 2. Respuesta inmune en reinfección
https://www.biogen.es/es/content/36-kit-de-test-rapido-covid-19 (2020) .
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REFERENCIAS BIBLIOGRAFÍAS
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de 2020. Consultado el 26 marzo 2020. Disponible en: https://www.bbc.com/news/world-asia-
china-51466362
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coronavirus.12 de marzo 2020. La Paz. Consultado 23 de septiembre 2020. Disponible en:
https://www.minsalud.gob.bo/3970-conoce-recomendaciones-sintomas-y-mitos-sobre-el-
coronavirus
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Fuentes de financiamiento: Esta investigación fue financiada con fondos de los autores.
Declaración de conflicto de intereses: Los autores declaran que no tienen ningún conflicto
de interés.
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